植物培育养护方法。
植物养护汇集了海量植物养护知识，植物的养护技巧，这些您知道吗？小编带你了解下植物养护的知识。感谢您的阅读，植物59小编向您推荐《景天的组培快繁技术》，希望您喜欢！
景天，俗称八宝、胡豆莲、佛指甲、景天菜，为景天科景天属多年生肉质草本植物，集药用、菜用于一身。全草入药，具清热凉血、润肺止咳之功效。主治血崩、痨咳、咽喉炎、鸡眼、体弱等症。食用部位为其嫩茎叶，可拌食、炒食、汤食等，味道鲜美，长期食用有轻身明目和防止癌细胞产生的作用。景天叶片肉质，绿色中透着粉白色，夏秋季开放白色或粉红色小花，可在庭院中作地被栽植，或作花坛镶边;也可盆栽作观叶植物置于室内，让人觉得生机盎然。目前景天的繁殖方法以扦插为主，繁殖系数小，繁殖速度慢。用组织培养法繁殖可不受季节限制，加快繁殖速度，提供大量优质种苗进行规模化种植，一方面可增加蔬菜新品种，增添食品的营养源，以适应不同层次消费者对蔬菜的需求;另一方面也为合理开发利用和保护野生植物资源开辟了一条新途径。现将景天的组培快繁技术总结如下。
1、外植体的获得：从盆栽的生长旺盛、无病虫害的景天植株上切取带腋芽的幼嫩茎段，剪去多余叶片后，先在洗衣粉液中漂洗5分钟，再在自来水下冲洗30分钟。然后在超净工作台上用75％酒精消毒30秒，0.1％升汞溶液表面消毒10～12分钟，最后用无菌水漂洗4～5次。放在无菌滤纸上吸干水分，接种于经高压灭菌(121℃、15～20分钟)的初代培养基上。并置于培养室中培养，培养温度232℃，光照时间12小时/天，光照强度1500～2000lx。
2、初代培养外植体：在初代培养基(MS＋3％蔗糖＋0.8％琼脂，pH调至5.8)上培养7～10天，腋芽开始萌动、生长，40天后芽长1.5～2cm。此时需及时转接进行继代培养，否则，超过45天后芽逐渐枯死。
3、继代培养：将长1.5～2cm的无菌芽从诱导成功的原茎段上切下，接种到继代增殖培养基(MS＋6-BA0～0.1mg/L＋NAA0～0.02mg/L)上。经过40～50天的培养，从芽的基部可形成3～5个2～3cm高的丛生状不定芽。然后将丛生芽切成1cm的小段(需带1个节)，转移至相同成分的新鲜培养基上继代培养，发现在含NAA0.02mg/L的培养基中，随着6-BA浓度的提高(0、0.05、0.1mg/L)，芽的发生率显著增加，分别为30％、258％、382％。继代周期40～50天。
4、组培苗的移植和田间管理：由于景天在分化与继代培养基中培养8～10天即开始生根，15天生根率可达100％，因此可省去生根培养阶段。当培养至40小时左右时，试管苗基部长出3～6条长2～3cm的白根，伴随形成较多的支细根。移植前，将培养40～50天、高4～5cm、具有3～6条根的试管苗置于自然条件下炼苗3天，取出生根小苗，仔细洗去根上附着的培养基，移植至大棚肥沃园土中，移植密度55cm。因景天组培苗较为脆嫩，移植时要轻拿轻放，以免损伤茎叶。移植后及时浇透水，注意遮荫，空气湿度保持在80％左右。7天后，移植成活率可达95％以上。景天组培苗移植成活1月左右，长出新的根、茎、叶时，需进行第2次移植，移植密度2020cm。移植时宜摘掉顶芽，以促分枝发生。在早春、晚秋和冬季需利用塑料大棚等保护设施栽培，以达到野菜四季生产，周年供应的目的。由于景天以取食嫩茎叶为主，生长期中应根据植株长势适时适量追肥，如追施0.1％～0.3％的速效性氮肥(如尿素)或喷施清粪水。此外，及时灌溉，中耕除草，防治病虫等常规管理也不容忽视。当景天植株长至15cm左右时即可进行第1次采摘，以后每隔30天左右可采摘1次。在保护地栽培条件下，年采摘7～8次，667平方米年均产量可达到4000kg左右。
扩展阅读
切花红掌组培快繁技术
红掌，是天南星科花烛属多年生常绿植物，叶革质光亮，单花顶生，花期长达1个半月左右。利用常规播种、分株法繁殖切花红掌，繁殖率极低，播种繁殖所需时间长，且易产生变异。利用组织培养快速繁殖切花红掌，可满足市场的大量需求。
材料与方法
材料来源为河南濮阳世锦公司自行选育的优质红掌切花品种。
外植体灭菌处理取切花红掌的幼嫩叶片及叶柄作为供试材料，首先在流水下冲洗1小时，同时用毛刷轻轻刷洗，在消毒前先将叶片切成1.5cm1.5cm左右的小片，将叶柄切成1.5cm左右长的小段，将其放入灭过菌的广口瓶中，用75％酒精浸泡30秒后，再用0.1％HgCl2浸泡消毒8分钟，用无菌水冲洗5次，在无菌纸上把叶片切成1cm1cm左右的小片，叶柄切成1cm左右的小段，接种在灭过菌的培养基上，所有无菌操作必须在超净工作台内进行。
培养基及培养条件基本培养基为MS加蔗糖30g/L、琼脂6g/L，pH值5.8。在不同培养阶段添加不同种类和浓度的植物生长调节剂，培养温度为25℃1℃，光照强度2000～3000lux，每日光照14小时。
结果与分析
不同外植体脱分化程度比较将2种不同外植体分别接种于MS＋6-BA1.5＋NAA0.7的同一培养基上，培养3周后，叶片外植体首先明显膨大，长出愈伤组织块，5周后，叶片外植体都长出了愈伤组织块(见表1)。观察发现2种不同外植体都能被诱导出愈伤组织，只是叶片较容易被脱分化。
6-BA对愈伤组织诱导的影响将消过毒的叶片接种于加有不同浓度6-BA的MS＋6-BA＋NAA0.7的培养基上进行培养，观察不同浓度6-BA对叶片外植体愈伤组织诱导的影响(见表2)。由表2可看出，不同浓度的6-BA对切花红掌叶片的诱导有明显不同。在无6-BA的培养基上，不能诱导出愈伤组织。当6-BA浓度低于1.5mg/L时，随着6-BA浓度的增大，愈伤组织诱导率及增殖率都随之增大;而较高浓度的6-BA又抑制了愈伤组织的诱导及增殖。当6-BA为1.5mg/L时，愈伤组织诱导率及增殖率都达到最大，效果最好。因此MS＋6-BA1.5＋NAA0.7对切花红掌是较理想的诱导培养基。6-BA对愈伤组织分化增殖的影响将诱导成功的愈伤组织块分别转接到含不同浓度6-BA的分化培养基上进行分化培养，观察不同浓度外源激素6-BA对愈伤组织分化产芽的影响(见表3)。
由表3可见，不同浓度的6-BA对切花红掌愈伤组织的分化具有明显不同的效应。随着低浓度6-BA浓度的增大，芽的分化率及产芽量都随之增大。当6-BA达1.0mg/L以上时，明显抑制了芽的分化，加速了愈伤组织的生长;当6-BA为0.5mg/L时，芽分化率达最高为91.43％，芽的生长速度也最快。将布满丛芽的愈伤组织切成小块，进行继代培养，每30天继代一次，可达到工厂化生产的目的。
生根培养从丛芽中切取2～3cm长的单芽接种于生根培养基中，经过15天的培养，观察其在不同培养基中的生长情况(见表4)。
由表4可看出，NAA和IBA0.2mg/L对切花红掌生根都有很好的促进作用。前者根的形态为粗短，后者为细长，但NAA价格较IBA低，所以1/2MS＋NAA0.2mg/L作为切花红掌的生根培养基的首选。
试管苗移栽取生根良好的试管苗，用水把苗基部的培养基清洗干净，栽入草炭与珍珠岩1∶1的基质中，浇透水，放到遮荫的温棚内，温度保持在18℃～25℃之间，保持周围湿度90％左右，经过精心管理，2周后，试管苗移栽成活率一般可达90％。经过多次移栽试验发现，保持小苗周围空气湿润，通气良好且保湿良好的栽培基质以及适宜的温度是切花红掌试管苗移栽成功的关键。
讨论
在切花红掌的组织培养过程中，首先诱导产生优质愈伤组织，分化出芽点多的优良无性系作为快繁材料，这样就能在短时间内生产大量优质种苗。
从培养基移栽入土，是从异养到自养的转变。试管异养条件是在无菌、高湿、低光照、温度稳定的环境中生长，而温室是相对干燥、强光、温差大的环境，因此，在试管苗移栽驯化期，要根据切花红掌的生理特点及试管苗特点选择透气、保温好、适合切花红掌生长的移栽基质，要保证适宜的温度和湿度，创造良好的生长环境，减少病虫害，提高移栽成活率。
众所周知，高浓度的细胞分裂素会造成植株的不可预知变异，在上述组培快繁技术中所用分裂素浓度虽未引起明显变异，但浓度大小一定要合适。
非洲菊切花组培繁苗技术
非洲菊为多年生草本花卉。叶片长椭圆形，边缘有钝齿，全株被细毛。其花序为头状单生，花朵直径8至12厘米，单瓣或重瓣，花色极为丰富。花茎于根抽出，高30至60厘米，挺拔妖艳，花期长。除7月至9月上旬高温不开花外，其他时间均可开花，鲜切花插置时间也长。但非洲菊中上乘品种多为F1代，很少授粉结籽。想要保持种性不变，最好是采用组织培养繁苗。现将非洲菊组培技术介绍如下：
外置体的选取选择品种纯、花色好、无病虫害的健康植株，剪取株体内部新叶(淡黄绿色)。将叶柄两侧叶片用消毒剪刀剪去，并将其叶柄剪成0.5厘米一段，放入消过毒的三角瓶中待用。(用叶片或花蕾作外置体也可以)。
培养条件①诱导芽培养基：MS＋IBA(0.5至1);②继代培养基同①;③生根培养基Nb＋BA(0.5至1)＋IAA(0.5至1)，琼脂0.8％至1％，蔗糖3％，pH5.8至6.0;培养温度20℃至22℃，光照强度1500至2000勒克斯，光照时间一天10至12小时。
不定芽诱导及生根培养
将三角瓶中备好的外置体，用70％酒精和0.1％干汞进行灭菌消毒，并用无菌水冲洗干净。在灭菌灯下，分置于盛有培养基①的三角瓶中，培养35天。当其愈伤组织分化出丛状芽团时，将芽团在无菌条件下切成小块，转置到盛有培养基②的三角瓶中断代增殖一次。25至30天后当增殖体1至2厘米高时，再切取增殖体0.5至1厘米，将其转置于盛有培养基③的瓶中进行生根培养。保持室温在22℃，经25至30天培养即可生根。由诱导、继代增殖到生根，共需90至95天。
炼苗移栽当瓶内苗根长1.5至2厘米时，将苗瓶放置到栽植处3至5天，开瓶使小苗完全适应栽植地环境。然后将瓶苗移出，洗净根部培养基，按43厘米栽于假植床里。假植床下层为粗沙、中层为筛细的腐殖土、上层为细沙，并用0.2％高锰酸钾消毒。栽后用微喷法浇透水，前10天湿度保持80％，温度18℃至22℃。当菊苗长出3至4片叶后，按5厘米将其移栽到土质疏松肥沃的假植床内。待苗高10厘米时，按2520厘米定植，进行正常管理。从组培到定植，大约需7至8个月时间。
麝香百合组培快繁知识和技术要点
百合是世界上著名的切花品种之一，靠常规的小鳞茎分株方法繁殖，繁殖系数较低，1株百合每年只能得到13个小鳞茎[1]有些种类可用鳞片扦插繁殖，但往往容易腐烂。另外，百合临时靠营养繁殖，容易感染病毒病，而影响百合品质[2]组织培养快速繁殖技术，能够迅速去除病毒和更新品种，具有较高的经济价值和开发潜力，因而得到广泛的应用。近年来，很多花卉研究者进行了百合的组织培养繁殖研究，所选的外植体有珠芽、幼茎段、叶片、鳞片等[36]，主要偏重于不同外植体对百合成苗和脱毒效果的研究，而关于利用组培苗叶片基部进行快速繁殖和结鳞茎的研究，报道较少[7]本试验以组培苗叶片基部为材料，对影响百合成苗和结鳞茎的两类主要激素进行了系统研究，省去了对外植体消毒处理的过程，减少了污染机率，为将来大规模生产百合小苗和鳞球茎在理论和实践上提供参考依据。
1资料与方法
1.1资料
采用的百合品种为麝香百合，英文名字为Easterlily。
1.2方法
取百合鳞片经消毒后，接种于MS培养基上，诱导丛芽体，丛芽体继代扩增后，剥取丛芽叶片基部进行处理。
1.2.16BA和NAA处置以MS为基本培养基，设计系列浓度的6BA和NAA处理组合，6BA(mg/L)为:0，05，10，20;NAA(mg/L)为:0，01，02，04共16个处理组合，代号分别为:D11D12至D44每个处置组合接种3瓶，每瓶接10个叶片基部，长度约为1cm。2个月后观察统计，生根率以长根植株占成苗植株的百分数进行统计;结鳞茎率以结鳞茎植株占成苗植株的百分数进行统计。
1.2.2培养条件百合适宜的培养温度为2225℃，光照强度为10001500lx，每日光照1016h，相对湿度约为70％
2结果与分析
不同浓度激素组合对叶片成苗和结鳞茎的处置效果见表1
21成苗率
成苗率是指所出的苗数占接种的叶基部总数的百分数。随着6BA浓度的加大，成苗率呈降低趋势。从4个浓度的6BA看，不加6BA的处置(D11D12D13D14成苗率最高，平均值为7625％，说明6BA对成苗有抑制作用。而适量的NAA对成苗有一定的促进作用，这16个处理中，以D12处置成苗率最高。
红叶石楠组培技术
组织培养已成为当前农林种苗生产中的一种重要的繁殖手段，与常规的无性繁殖方法相比，它具有繁殖速度快、周年生产、产品一致性好等优点，尤其在繁殖一些种源稀缺的品种时，更能体现它的优势。红叶石楠是近年从国外引进的一个国际新品种，组织培养可以分以下几个步骤进行：外植体的取得初代培养(无菌系的建立)继代培养(增殖培养)生根培养炼苗及过渡移栽移植到大田。
外植体的取得
选择红叶石楠的茎尖和茎段作为组培用的外植体。在取得红叶石楠母株后，先置于温室内培养2周左右，期间注意不洒叶面水，每隔3-5天喷施一次杀菌剂，可有效降低初代培养时的污染率。在实际操作中，选取嫩枝先端未木质化和半木质化部分，剪成长10cm左右的单芽，茎段部分去叶留2mm左右叶柄，茎尖部分可保留半张小叶，以饱和洗衣粉溶液浸泡3分钟，用清水冲洗后备用。
初代培养
清洗后的外植体在接种前需进行消毒处理，在超净工作台上用75％酒精浸泡10秒钟，再转入0.15％升汞溶液中灭菌8分钟，倒去灭菌液，用事先准备好的无菌水冲洗4-5次，沥干水后，即可将带腋芽的茎段或茎尖以生态学下端朝下，垂直接种到初代培养基上，以每瓶培养基接种一个外植体为宜。经过多次试验，初代培养基以1/2MS＋蔗糖30g＋琼脂7g＋2.0BA＋0.2IBA为最佳，pH值5.5-5.8，培养室温度控制在25℃-30℃之间，光照12小时。接种后一周左右腋芽开始萌动，30-40天可伸长到2cm左右，即可切下进入下一阶段的继代(增殖)培养。
继代培养(增殖培养)
一般第一次继代时增殖率较低，经2-3次继代后增殖数可达5倍左右。继代培养基可用MS＋1.0BA＋0.1IBA，pH值5.5-5.8之间，每日光照12小时。无根的试管苗经30-40天培养达到3cm左右时，即可切割以扩大繁殖。当继代苗达到一定数量后，可以进行生根培养。
生根培养
当红叶石楠无根苗长到高2cm左右时，可转移到生根培养基上培养。生根培养基可用1/2MS＋0.2-0.3NAA，一般经一周左右可见红色根生成，30-40天后根长1-3cm，即可进行炼苗反驯化，准备移栽。
炼苗及过渡移栽
红叶石楠组培苗移栽可省略瓶内炼苗过程，如能在温室中拧松瓶盖放置3-5天炼苗则更好，但要注意温度应控制在20℃-30℃之间。过渡移栽是整个组培过程中最为关键的一步，如失败，则前功尽弃。因此移栽前要准备充分，如能在早春和秋冬季移栽在温床上效果最佳。在实际操作中，应根据不同地区的气候特点而有所区别。在江浙一带，过渡苗床可建在普通单体塑料大棚内，床宽1.2m左右，床四周用砖砌高30cm，床底整平，有条件的可加铺地热加温线，上铺15-25cm的移栽基质，基质以蛭石∶珍珠岩∶泥炭=1∶1∶1为好。
组培苗是在无菌条件下繁育的，在移栽过程中对外界环境需要一个渐进的适应过程，因此需要对过渡苗床进行较为严格的消毒处理。实践中我们使用1000倍敌克松溶液浇透整个苗床基质，再用0.15％高锰酸钾溶液喷洒苗床表面及四周，24小时后即可移栽小苗。也可用800倍福尔马林喷洒苗床表面，用塑料薄膜密封24小时以上，再通风12小时，即可使用。
幼苗从瓶内取出后，用清水将根部的琼脂等洗净，同时应注意尽量减少根部损伤。种入苗床后，浇灌时尽可能选择清洁的水源，移栽当天喷施1/4-1/2MS营养液，并喷施800-1000倍甲基托布津或1000倍多菌灵药液，以后每隔一周喷施一次，需连续喷施3-4次，移栽初期需特别注意保持苗床和空气湿度，一般需全封闭管理一周左右，再半封闭一周左右，根据天气情况在25天左右可逐步通风，除去覆盖物。在春秋季节移栽时，需遮荫三周左右，冬季遮荫二周左右即可。同时应注意控制苗床温度在15℃-30℃之间才利于成活，如环境温度超过35℃，则不宜移栽。一般过渡移栽50天后，小苗就可上盆移栽，春季就可移入大田。
大田移栽
大田移栽的时机应根据小苗生长情况和天气情况确定。一般小苗长至5cm以上移栽就可以保证95％以上成活率，如在10cm以上移栽则效果更好。大田移栽后期管理与其他方法繁殖的小苗一样操作即可。
杉木组培苗的移植技术
1、移植圃地选择：
1.1圃地选择：移植圃地应选择交通方便、背风、日照较短、水源充足洁净，排水良好，以阴坡、半阴坡为好。
1.2圃地准备清理：应提前清除圃地内及四周杂草及废弃物，集中烧毁，装袋前应先施150kg/667m2或用5％福尔马林或用0.5％高锰酸钾进行圃地病菌防治。
2、基质配制及装袋：基质宜选择有良好的保水、保肥性能，利于排水、透气，适于苗木生长的酸碱度(pH4.5～6.5)不能带有病菌。～般选择红心土或黄心土。基质配制，可按红心土加5kg/m3钙镁磷。1.0m，走道宽0.40.5m规格摆放好，营养袋规格为8cm11cm。移植前1-2d用5％0高锰酸钾进行基质消毒，并淋水至基质湿润。
3、移栽过程：组培苗在长到23cm高时可出瓶移栽。将杉木瓶苗取出，经消毒后，置于清水中漂洗，洗去根部的培养基，此过程一定要小心，不要碰断幼嫩植株，洗净后即可栽入容器中。
3.1苗木移栽前处理：把待移植的瓶苗取出放入装有清水的大盆中，然后把苗基(根)部的培养基漂洗干净。洗好的瓶苗，应根据是否生根分别整齐地排放在带有湿毛巾的塑料筛中，并做好保湿工作，以免苗木失水受伤。无根苗愈伤组织大于0.4cm，或愈伤组织发黑、坏死的应对愈伤组织进行部分切除处理;愈伤组织较小无发黑、坏死的不必切除。移植前应把装有苗木的塑料筛放入0.5％o高锰酸钾溶液中浸泡12min，对瓶苗进行消毒处理，消毒后应用清水漂洗。消毒处理后的有根苗可以直接移栽，无根苗应先用生根剂处理后再移栽，把装有无根苗的塑料筛放人ABT1号100mg/kg溶液中浸泡1～2min即可。
3.2杉木组培苗移植：瓶苗移植时，应根据苗木大小、优劣、根系情况进行分级分别移栽，以便今后管理，移植时营养基质应保持湿润且疏松。移栽时应根据苗木长短适当深栽，移栽深度为12cm左右，因为适当深栽，可以减少萌蘖。移植前应做好准备工作，移植人员应相对集中，并用喷雾器及时对移植好的苗木喷雾保湿，以免苗木失水萎蔫，影响苗木移植成活率，移苗好选择在早、晚或阴天进行。气温高、光照强的天气应做好遮阴工作。瓶苗移植后，应即时浇上0.1％多菌灵溶液作为定根水，并盖上薄膜及70％黑色遮阳网。
4、杉木组培苗苗期管理：
4.1水分：刚移植的组培苗对水分较为敏感，因此，应保持苗床营养袋基质湿润，还未生根、成活前，拱棚内空气湿度应保持在75％～85％。
4.2温度：温度不仅影响试管苗移植后生长速度，还影响杉木组培苗移栽生根率、成活率。温度过低时无根苗生根时间较长，苗木生长速度慢;温度过高时，容易引起未成活(特别是未生根)的苗木枯死。因此，苗圃的温度应保持在1835℃范围内。遇到连续低温气候，应加盖塑料薄膜保温，并适当延长薄膜覆盖时间，以保证苗木生长所需温度，温度高于35℃时应及时降温，特别是苗木未生根前。
4.3光照：杉木组培容器育苗应多在遮阴条件下进行，一般要采用散射光，避免阳光直射而造成伤苗，可用70％黑色遮阳网，挡住直射光，有利于提高移植苗生根、生长。成活后随着生长逐渐增加光照，到了生长后期要全光照、以促进苗木的木质化程度，提高苗木造林成活率。
4.4肥分管理：肥分管理应遵循先稀后浓、薄施勤施的原则，苗木生根前(或成活前)每10d可结合喷杀菌剂进行根外追肥1次，生根后根据苗的长势每15d施肥1次。苗木封顶时施无N高K柿(0N：1P：1K)、尿素一般不超0.5％、复合肥0.1％-1％，过钙1％-3％，营养液0.1-1％，高乐0.1％-0.3％。
喷肥或施肥应选择傍晚进行，施尿素或复合肥、二铵后应即时用清水把残留在叶片中上的肥分洗净，以免引起肥害。
4.5荀期病虫防治：杉木组培苗苗期虫害较少，主要为杉梢小卷蛾、黑翅士白蚁等;杉木组培苗苗期抗性相对较弱，在高温高湿的环境中，易受到一些病原菌的侵染，易发生主要病害为：猝倒病、赤枯病、炭疽病、生理性黄化病、细菌性叶枯病等。技术人员应经常巡视苗床，并遵循预防为主，综合防治的原则，做到早发现、早防治。并用多菌灵1000倍、托布津8001000倍、可杀得9001100倍、敌克松500倍、百菌清800百倍、1％波尔液、硫酸亚铁等，进行交替喷雾或淋施防治。连续阴雨天气，应注意通风透气。
5、小结：杉木瓶苗移栽时要选择疏松透气的栽培基质、滤水的栽培容器，栽前基质要消毒。小苗栽下后要经常喷水。⒐病虫害防治也不能忽视。只有掌握好小苗管理的各个技术环节，才能使瓶苗移栽后顺利度过缓苗期，恢复生长，长成健壮的成品苗。
枣树快繁技术
1建床插床建在露地全光照条件下，用砖砌成宽1.2-1.5米插床，长视规模而定，插床上架设装有弥雾喷头的水管。
2基质下层铺大石子或卵石30cm厚，上层铺粗河沙20-30Cm，然后喷洒0?2％高锰酸钾液消毒。更多绿色尽在植物59网
3插穗准备6、7月采集未木质化枣头枝与二次枝。采穗时间最好在早上8点，若需长距离运输，采后立即放大清水中浸泡一下，再装进遮阴的塑料袋内，运回后立即剪成15-20CM的小段，保留上部叶片，去掉下部3-5cm段嫩叶，按50枝一捆放人多菌灵800倍液中浸泡5分钟，然后分别用300PPM的D型生根粉及300PPM的C型生根剂速蘸插穗基部10秒钟，取出后按2＊3CM株行距扦插，深度2-3cm。
4插后管理插后立即启动全光照间歇弥雾装置，生根前喷雾间隔时间短，以保持叶面有一层水膜为限;生根后，白天20-30分钟喷一次，夜间1-2小时一次。移栽前6天开始延长喷雾时间，一般40-60分钟一次。插后15天左右进行一次叶面追肥(0?2％尿素液)，插后每周喷一次50％多菌灵1000倍液。5采用该技术可使枣的生根率达93％以上，插后9-10天产生愈伤组织，15天开始生根。是实施优良枣品种快繁的一项先进技术。
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