有关植物组织培养的知识。

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蝴蝶兰属热带气生兰,花形似蝴蝶,因而得名。其花形态美丽,色彩丰富,花期长,在热带兰中有兰花皇后之美称,是近年来最受欢迎的洋兰之一。蝴蝶兰是单茎性气生兰,植株极少发育侧芽,且种子极难萌发,对其进行常规性的繁殖,增殖速度很慢,因此,多采用组织培养的方法对其进行快速繁殖,以达到工厂化育苗的目的。

1植物材料蝴蝶兰Lm品种的幼叶。

2培养条件诱导培养基:MS+BA3.0+NAA0.2。继代培养基:MS+BA2.0+NAA0.5。在上述培养基中均加入蔗糖20g/L(克/升),琼脂12g/L(克/升),椰汁200mL/L(毫升/升)。育苗培养基:1/2MS+IBA1.5+NAA0.05,并加入蔗糖20g/L(克/升),琼脂12g/L(克/升),活性炭5g/L(克/升),椰汁200mL/L(毫升/升)。培养温度25℃-28℃,每日光照10h-12h(小时),光照强度1600lx-2000lx(勒克斯)。

3培养方法与生长分化情况

3.1外植体接种从蝴蝶兰植株上取下幼叶(以3-4月龄的植株最好),放在自来水下冲洗干净,然后放入烧杯内待用。在超净工作台上,将烧杯内的叶片用75%酒精消毒30s(秒),然后用无菌水清洗2-3遍,再用0.1%升汞溶液浸泡11min(分钟),最后用无菌水冲洗4-5遍。用无菌手术刀将叶片切成5mmx5mm见方的小块,平放或按极性接种在诱导培养基上,近轴面向上,每瓶不宜接种太多。

3.2原球茎的诱导与增殖幼叶切块在诱导培养基上培养1-2月后,从每个叶片组织块上产生1-7个不等的原球茎,此时,在无菌条件下,将原球茎取出切割成几小块,转入继代培养基中,进行增殖培养。培养一段时间(60天左右)后,再进行分割转移,通过这种方式,原球茎可成倍增长。

3.3小植株的培养将不需继代的原球茎转移到育苗培养基上分化出芽,并逐渐发育成丛生小植株。在无菌条件下,切开丛生小植株,将小植株转入育苗培养基上培养。不久,小植株生根,当小植株长到一定大小时,移入温室。切离丛生小植株时,基部未分化的原球茎及刚分化的小芽应接入诱导培养基中,作为种苗。一段时间后,将长大的种苗移出,种植,小苗及原球茎可继续增殖与分化。

3.4移栽及管理当小植株长至4cm左右,叶3-4片,根2-3条时,即可移栽。将小植株带瓶移入温室2周左右,然后打开瓶塞炼苗3-5d(天),取出苗后,用水冲洗掉植株根部的培养基,将根部放于70%甲基托布津溶液中消毒4h(小时),药液浓度为1500倍。将苗吸干水分后阴晾1h(小时),然后定植于水苔育苗盘中。刚定植的植株应遮光50%左右,温度控制在18℃-28℃,湿度以80%-90%为宜,以后逐渐保持在70%左右。缓苗后(两周左右)逐步提高光照强度至6000lx-8000lx(勒克斯)。蝴蝶兰根部忌积水,喜通风和干燥,水分过多,易引起根系腐烂。刚出瓶的小苗应勤补水,中苗或大苗根据干湿程度浇水,一般7d(天)-10d(天)左右,基质变干,盆面发白时,宜浇水,浇水时要让整个植料湿透。

4小结在蝴蝶兰的组织培养过程中,叶龄与成功率密切相关,取叶的实生苗年龄以3-4月为最好,其诱导率及每个外植体上的原球茎个数最高。叶切段大小与诱导率直接相关,切段太小,存活率低,以0.5cm左右为最好。此外,出苗时间应掌握在春季为好,且在移栽初期的适时遮阴极其重要,培养条件温度不宜超过28℃。

扩展阅读

甘蔗组织培养苗田间的快速繁殖技术


近年来,为了加速良种推广繁殖速度,采用先进的生物技术,利用甘蔗组织或腋芽,进行组织培养。由于组织培养苗长势弱,前期对生产环境适应性不强,栽培上应以规范栽培,精细管理为重点,加速快繁为核心,实现良种快繁的目的。

1规范栽培,精细管理

1.1田块选择:选择土壤质地好,地势平缓,土壤肥沃,排灌方便的田或水浇地。

1.2移栽:精细整地,做到田平、沟直、土细。田100cm开定植沟,水浇地95cm开定植沟,打塘种植,塘距33cm,亩水田用苗量2000株,水浇地2200株。

1.3肥水管理:定植时亩施50千克普钙作底肥,移栽后15天,施一次薄肥,亩施尿素10千克,促进蔗苗早生快发,栽后经常保持田(地)块土壤湿润,10天后灌1次透水。成活后管理与常规栽培相同。

2田间快繁技术

甘蔗组培苗第一代种植稀,分蘖多,单丛有效茎多,收获时每亩有效茎并不比直播少,但种植苗量少,生产上多应用稀植精管,以最大限度地保证分蘖成茎,因此组培快繁技术将在生产中广泛应用。目前常用的方法有以下两种:

2.1反复取茎法:

当每丛约35条茎拨节伸长至7090cm左右,每条茎上有效芽达45个时,砍下主茎,取蔗茎进行大田移栽。下种前,晒种12天,移栽时采取双芽梯形下种,亩下芽量10001500芽,若在春秋季节,气温高,雨水多,下种量可适当减少。如此多次反复取茎进行大田移栽,其繁殖速度为常规田间繁殖的30倍。

2.2取茎分蔸法:

取茎分蔸法即是将成茎拨节苗砍下栽种后,对其余小分蘖进行分蔸移栽,从而达到提高甘蔗良种繁殖倍数的目的。

蔗茎苗栽种方法同大田生产,取茎时间同反复取茎法。但取分蘖小苗移栽时要多带一些土,少伤根,除去老叶,每片绿叶剪去三分之二,有利于减少水分蒸发,提高成活率。由于分蘖苗生长速度不一,长势不同,移栽前进行分类处理,有利于小苗的生长达到苗匀、苗齐、苗壮,利于田间管理。移栽季节,应选择在雨季前或雨季中,此时移栽成活率高,旱季则成活率低;移栽时还应注意取成茎苗时间,若取苗太迟,分蘖苗已开始衰退,造成营养不良,成活率低。

红豆杉的组织培养


红豆杉是常绿乔木,小枝秋天变成黄绿色或淡红褐色叶条形,雌雄异株,种子扁圆形。种子用来榨油,也可入药。属浅根植物,其主根不明显、侧根发达,高30米,干径达1米。叶螺旋状互生,基部扭转为二列,条形略微弯曲,长1~2.5cm,宽2~2.5mm,叶缘微反曲,叶的端缘渐尖,叶背有2条宽黄绿色或灰绿色的气孔带,中脉上密生有细小凸点,叶缘绿带极窄,雌雄异株,雄球花常单生于叶腋,雌球花胚珠单生于花轴上部侧生短轴的顶端,基部有圆盘状的假种皮。种子扁卵圆形,有2棱,种卵圆形,假种皮杯状,红色。因为红豆杉的树皮有抗癌物质紫杉醇,所以有许多人进入林中来剥树皮,使得红豆杉的数量急剧下降。

红豆杉的组织培养技术

(一)、材料

较为适宜的组培外植体为新生的嫩枝,取材时间以每年的7、8月份为宜

(二)培养过程

1、愈伤组织诱导用培养基

培养基的基本成分采用B5或MS的微量元素、有机物和铁盐,外加KNO32500mg/L,NH4NO3825mg/LKH2PO4240mg/L,MgSO4?7H2O370mg/L,CaCl2?2H2O660mg/L。添加的激素种类及数量为NAA0.8-1.0mg/L、BA0.3-0.5mg/L,调PH值为5.8-6.0;琼脂粉和蔗糖用量分别为5.6-6.0g/L和30g/L。配置好的培养基用培养瓶分装,经高温、高压灭菌后备用。

2、材料消毒与接种

取新生的嫩枝(带有针叶)放入加有0.02%洗洁精的自来水中浸泡10分钟,浸泡过程中需经常搅动,浸泡结束后用自来水冲洗10分钟以上。将嫩枝转入一干净的三角瓶中。

以下所有操作必须在超净工作台上进行无菌操作。首先往三角瓶中加入75%的酒精,加入量应为嫩枝体积的10倍以上,浸泡杀菌30-60秒,倒掉酒精,用无菌蒸馏水年漂洗一次;再将嫩枝转入事先已高压消毒的三角瓶中,加入15倍与嫩枝体积的0.1%的升汞溶液,浸泡杀菌5-8分钟,浸泡过程中要不断摇动,以使升汞与嫩枝充分接触。为了达到彻底杀菌的效果,有人建议在升汞溶液中加入0.02%的表面活性剂,这样可能更好一些,但要相对缩短杀菌时间。倒掉升汞溶液,用无菌蒸馏水冲洗4-6次,每次1-2分钟,以彻底除去升汞。将嫩枝从三角瓶中分批取出,用无菌滤纸吸去材料表面的水分,将嫩枝切成0.5-0.8CM的小段,并切取部分针叶,嫩枝切段和针叶同时用作外植体,接种在诱导愈伤组织的培养基上。接种时要让针叶的腹面接触培养基,嫩枝的植物学近地端接触培养基。注意用过的升汞溶液和冲洗液不要到处乱倒,以防重金属污染。将接种好的培养物放置于培养室中培养,温度(252)℃,光照强度1500-2000lx,光照时间10h/d。

3、愈伤组织诱导

红豆杉嫩枝和针叶在培养基上2-3周后即开始形成愈伤组织,约4-5周愈伤组织直径可达1-2CM。不同种的红豆杉和不同的外植体之间形成愈伤组织的比率、时间早晚和生长速度存在明显差异,南方红豆杉和东北红豆杉的嫩枝切段出愈较快,出愈率分别为89%和70%,针叶出愈较慢,出愈率也较低,分别为36%和15%;普通红豆杉出愈较慢但出愈率较高,嫩枝和针叶的出愈率分别为94%和30%。愈伤组织开始时为灰白色,随着愈伤组织的增大,先期形成的愈伤组织颜色由灰白色变为棕色,这可能预示着愈伤组织在逐渐发生褐变,因此要及时给予注意,尽量保持较低的培养温度和经常更换培养基。当愈伤组织生长到一定大小时即可转入液体进行悬浮培养。

4、细胞悬浮培养与继代

利用愈伤组织而不是用小苗或大树来生产提取紫杉醇,是一条正在探索的途径,如果成功则可以实现工厂化生产,从根本上解决红豆杉资源不足的矛盾。因此,通过嫩枝和针叶培养产生的愈伤组织不需要进行芽分化的诱导,而是将愈伤组织直接转入细胞悬浮培养。具体做法是将从嫩枝和针叶上产生的愈伤组织取下来直接转入液体培养基中进行振荡培养,所用培养基与上述诱导培养基相同。在初次将愈伤转到液体培养基即可适当加入少量纤维素酶和果胶酶,以加快愈伤组织分离成单个细胞或小细胞团。

在初次悬浮培养阶段可用50ml的小三角瓶,每瓶加10ml液体培养基,放入愈伤组织,在20-23℃的摇床上振荡培养,光照条件与普通培养相同。每周需要更换一次培养基,更换时用5-10ml的平头移液管将三角瓶中的愈伤组织、单个细胞或细胞团过滤出来,直接转到新鲜的培养基中即可。在悬浮培养过程中应随时注意每一瓶中愈伤组织、细胞团生长的情况,挑选生长速度最快和特征最好的作为继代的材料,毫不可惜的丢掉那些不好的(生长缓慢、颜色不正等)材料,这样经过几代的选择,就可以挑出符合理想的材料,作为悬浮系进行扩增培养。

用植物组织培养这种先进的培养方法,能够迅速、大量的生产出目前人类急需的红豆杉,能够为癌症的治疗提供很大的方便,社会以及积极效益都非常的明显。

新几内亚凤仙的组织培养


凤仙是凤仙花科凤仙花属多年生常绿草本植物。新几内亚凤仙是凤仙花家族中的一个新品种。它花色丰富,四季开花,花期长,叶色独具特色,作为周年供应的时尚盆花,日益受到了人们的青睐。它的传统繁殖方法是通过播种繁殖,但播种繁殖需要恒定的温度,而且种子价格比较昂贵,发芽率低。近年来,用无性繁殖,利用组织培养技术,既可以在短期内取得大量的优质脱毒苗,又可避免因常规无性繁殖而导致的种性退化。具体可用新几内亚凤仙的茎段作为外植体,对其进行离体快速繁殖。

材料与方法

试材处理

从新几内亚凤仙植株上剪取带有腋芽的嫩梢,去掉叶,先用自来水冲洗10分钟,再用洗洁剂溶液洗涤1-2次。在无菌条件下,依次用70%的酒精浸泡30秒钟,2%的次氯酸钠浸泡12分钟,无菌水冲洗3-5次。最后将处理好的嫩梢切成每个节间约0.5cm长的带芽茎段接种在预制好的初代培养基上。

培养条件

分化培养基的选择

以MS作为基本培养基,分别设置BA0.5、1.0、1.5、2.0mg/L,NAA0.2、0.4、0.6、0.8mg/L各4种浓度,共16个组合。筛选分化培养基中BA和NAA最佳组合,3次重复。各培养基组合均加入蔗糖3%-4%,琼脂6-8g,Ad30mg/L,调PH值为5.8。

生根培养基的选择以MS为基本培养基,设置IBA0.3、0.6、0.9、1.2、1.5mg/L5种浓度,摸索最佳生根条件。各培养基均加入蔗糖2%-2.5%,琼脂6-8g,调PH值为5.8。

继代培养

新接的外植体约30天萌发成苗,苗高2-3cm时,将小苗剪成0.5cm长带芽茎段,放入分化培养基中继代培养。生根培养

小苗高3cm左右时,从基部剪下,接种于生根培养基上,进行生根培养。

小苗移栽

小苗生根培养根长达2cm时,进行移栽,先移入温室中炼苗1-2天,温室中培养2-3周后上盆。

结果与分析

不同浓度的BA和NAA组合对新几内亚凤仙分化出苗的影响以MS作基本培养基,4种浓度BA和4种浓度NAA组合,对新几内亚凤仙出苗影响。

结果表明:芽的增殖和嫩梢的增长不仅取决于BA、NAA的绝对数量,而且取决于二者相对比例。浓度最大BA/NAA条件下,繁殖系数17达最大,而且嫩梢生长度也达到最大1.23,浓度最小BA/NAA条件下,繁殖系数、嫩梢长度之比为10/0.67,二者绝对值处于中间状态。综合芽的形成和嫩梢生长两种情况看:高浓度的BA(1.5-2.0mg/L)与NAA配合时,嫩梢生长较正常,平均株高1.09cm,增殖倍数为14,较低浓度的BA(0.5-1.0mg/L)与NAA配合时,繁殖系数为8.9,平均株高为0.68cm,长势不良,实验条件下以BA2.0mg/L+NAA0.2mg/L效果为最佳。不同浓度的IBA对生根的影响

以MS为基本培养基,5种浓度IBA条件下生根效果见表2。结果表明:开始生根天数随IBA浓度加大而缩短,IBA浓度从0.3-0.9mg/L范围内,随浓度加大,生根率、每株根数增加,超过0.9mg/L,生根率下降。且多形成粗大根,产生愈伤组织或从愈伤组织上再生根。实验条件下,以0.9mg/L生根效果最好,生根较快,根系生长正常,根数较多。

小苗移栽

已生根小苗经20天,待根长达2cm时,取出试管苗,洗去根上琼脂,移至透水通气的蛭石中,先在培养室中温度20℃-25℃,相对湿度65%-75%条件下培养2-3周,然后移至散射自然光下炼苗1-2周,最后上盆进入温室,成活率可达95%以上。这期间除了注意保温保湿外,土壤湿度不宜太大,温度以23℃-25℃为好,注意采用杀菌剂保护,避免幼苗腐烂死亡。

结论

MS+BA2.0mg/L+NAA0.2mg/L+Ad30g/L+蔗糖3%+琼脂8g/L,调PH值为5.8是新几内亚凤仙茎段培养较为理想培养基。继代培养天数约为30天左右,繁殖系数可达17,嫩梢生长正常。

在MS+IBA0.9mg/L+蔗糖2.2%+琼脂7g/L,调PH值为5.8的培养基上,新几内亚凤仙试管苗生根效果较好,生根率可达95.4%,根系发达,植株生长旺盛。

生根两周后的试管苗尚需炼苗2-3天,经培养室移植培养2-3周,自然光下1-2周炼苗可上盆入温室,成活率达95%以上,小苗成活关键是基质选择及温、湿度控制。

玫瑰的组织培养技术


玫瑰属蔷薇科蔷薇属植物,不但具有一定的园林观赏价值,而且有较高的经济价值和药用价值。玫瑰常规以分株、压条、扦插等方法繁殖,繁殖率较低。现甘肃省庆阳县有一玫瑰生产基地开展研究建立玫瑰的快速繁殖体系,并为玫瑰的工厂化生产和规模化种植提供科学依据。

1、材料:以甘肃省陇东学院校园内栽培的玫瑰为材料。

2、研究方法:以MS或1/2MS为基本培养基,附加不同浓度的6-BA、IAA、IBA、NAA等,蔗糖3%(为了降低成本,蔗糖均用市售白砂糖代替),琼脂0.35%,pH5.8,培养温度为25℃,光照时间每天12小时,光照强度约1500lx。将启动培养基上腋芽长出的无根苗剪成单芽茎段,转人不定芽诱导培养基上,诱导不定芽产生;不定芽继代周期为5周,增殖培养时将不定芽块切割成小芽块转至增殖培养基中,每100毫升培养瓶中接种3个芽块;生根前将较弱的无效苗转人壮苗培养基中促使苗健壮;生根培养时将高约3厘米左右的芽剪下插入生根培养基,生根苗移栽采用二步法。

1、无性系的建立。2005年6月从该院校园栽培的植株上取生长健壮的半木质化枝条,依常规方法灭菌处理后,剪成茎尖和带腋芽茎段,接种于无性系建立培养基上。⒛天后统计实验结果显示,就无性系建立而言,基本培养基MS比1/2MS效果好,在基本培养基中附加每升0.5毫克的6-BA和每升0.05毫克NAA,有利于愈伤组织的诱导和芽的萌生,愈伤组织诱导率可达16.5%,萌芽率为52.9%,且芽生长健壮。

2、不定芽的诱导。将无性系幼茎切成单芽茎段,分别接种在不定芽诱导培养基上,结果表明,以MS为基本培养基,附加每升1~3毫克的6-BA和每升0.1~0.5毫克的NAA,均可高频诱导产生不定芽,当6BA以较高浓度(每升2~3毫克)与NAA配合使用时,芽诱导率均为100%,产生的不定芽数量多,但茎不伸长,均为叶片,长势弱;较低浓度6-BA(每升1毫克)与每升0.1毫克NAA配合使用,虽然不定芽诱导率下降,但芽长势良好。说明MS附加较低浓度的6-BA与NAA利于玫瑰不定芽诱导与生长。同时发现,诱导产生的包埋于培养基中的不定芽长势最好,可能与其充分吸收营养有关。

3、芽的继代增殖培养及有效苗的产生。将产生的不定芽块切割成小芽丛进行继代增殖培养,增殖培养基为MS+6BA每升0.3毫克+NAA每升0.05毫克,继代周期为5周。在此培养基上,玫瑰仍以不定芽方式增殖,且大部分不定芽明显增高,叶片展开,长势较好。每l00毫升培养瓶接种3个芽块(约35个芽),经过一个继代周期培养,芽总数达132个,增殖系数为3.77。其中,高度在3厘米左右,能用于生根的有效苗的比率为43%,将较矮、长势弱的无效苗剪下,转到1/2MS壮苗培养基上,培养20天左右,芽苗明显长高、健壮,叶片舒展,叶色浓绿,可用于生根。

4、激素浓度对生根的影响。将增殖培养基上高度在3厘米左右的芽剪下,与壮苗后的芽一起插人生根培养基中诱导生根。结果显示,玫瑰为难生根植物,不同培养基和激素浓度对玫瑰生根的影响差异较大。培养基中无机离子强度对玫瑰生根有明显影响,无机离子减半(l/2MS)有利于生根。单独附加每升0.2~0.5毫克的IAA、IBA或NAA对根的产生及根的生长均有促进作用。每升0.2~0.5毫克的IAA与每升0.2~0.5毫克IBA配合使用,生根率明显提高,平均为38.6%,且切口端愈伤化程度低,产生的根短而粗壮,利于移栽;IAA、IBA、NAA二者配合使用,生根效果最佳,生根率最高达16.3%,产生的根粗壮、数量多,便于移栽成活。筛选出最佳生根培养基为1/2MS+每升IAA0.5毫克+每升IBA0.5毫克+每升NAA0.2毫克。

5、炼苗与移栽。将生根的组培苗在室内打开瓶盖炼苗2~3天后,在自来水中洗净根部培养基,移人珍珠岩苗床,外搭塑料拱棚及遮阳网,控制光照度在5000~10000lx以内,温度在15℃~35℃,湿度在85%以上,每周喷1次10%的MS大量元素营养液,2周后逐渐打开小拱棚,增加光照,4周后,便可进行常规管理。此法移栽,成活率可达94.3%。

试验结果表明,适合玫瑰不定芽诱导的培养基为MS+6-BA每升1.0毫克+NAA每升0J毫克;适合芽增殖的培养基为MS+6-BA每升0.3毫克+NAA每升0.05毫克,在此培养基上芽的增殖系数为3.77,可直接用于生根的有效苗的比率为43%;适合芽生根的培养基为1/2MS+IAA每升0.5毫克十IBA每升0.5毫克十NAA每升0.2毫克,在此培养基上芽的生根率为76.3%。生根苗炼苗后以珍珠岩作基质,移栽成活率为94.3%。据计算,当增殖系数为3.Ll、生根率为76.3%、移栽成活率为94.3%时,1个芽经1年10代培养,可产生约58万个芽,考虑到生产设施及人力等因素的限制,如此多的芽不可能一次全部生根,导致无法处理,甚至倒苗。因此,在实际生产中,如果从第7代开始将高度在3厘米左右43%芽进行生根与移栽,则1年可由1个芽生产3349株商品苗;同样,如果从第8代开始,1年l个芽可生产12,000余株商品苗。这样,对降低成本、提高效益是十分必要的。

蝴蝶兰的家庭栽培养护


蝴蝶兰是一种适合家庭室内栽培的高档观赏花卉。但只要掌握其栽培要点,一般家庭种植也能开出千姿百态、绚丽夺目的花朵。

盆栽材料:主要用苔藓或树皮等为栽培介质。

湿度:最适宜蝴蝶兰生长的温度为16℃-30℃。在冬季,如果室内有供暖设施,这个温度不难达到。但要注意,不能将花置于供暖设施让,或离供暖设施过近,应放在室内窗台上,并用窗沙遮光,天暖后可移至阳台,并注意通风遮光。

湿度:室内应保持相对湿度50%以上,不能放置在空调旁或直接吹风处。如湿度过低,可在旁边置水盆提高空气湿度,或于植株盆沿绕上湿棉条;也可用加湿器,或用喷雾器在叶面喷洒细雾,见叶面潮湿即可。切记,不能将水雾喷到花朵上。

光线及遮荫:蝴蝶兰切忌阳光直射,但它亦不耐荫。置于室内时,应将花放于窗台附近。如置于窗外,则应进行遮光处理,注意保证有充足的光线。

浇水及施肥:蝴蝶兰的根被埋在栽培基质中,如果基质中积水,容易引起根系腐烂。应保持根部稍干,少浇水。一般家庭养植每7-8天浇水一次即可,以见干见湿为原则。家庭栽培蝴蝶兰,如果用水草作栽培基质,应少施肥。生长期最好用易溶于水的氮磷钾复合肥,比例为1:3000为佳,开花及湿度较低时不宜施肥,施肥时将肥料溶于水中浇灌即可。总之:浇水宜偏干不偏湿;施肥宜偏淡不偏浓。

蝴蝶兰小苗至开花需两年时间左右,开花期可达2-3个月。花枯萎后,可将花从基部上4至5节处剪去,2-3个月后会再度开花,但这样植株养分消耗过大,对生长不利。如想来年再度开出好花,最好将花序轴从基部剪下。当基质老化时,应及时更换,宜在新叶长出的5、6月份换盆,最好是在原水草处包台一再上一层水草后置于稍大的花盆中。

蝴蝶兰可以水培养殖吗


在我们生活中,花卉植物种类非常的多,很多人都喜欢在家里养殖一些美观的植物摆放家里作为观赏品,但大部分土培植物在养护过程中难免容易弄脏房间,所以有些花友们更喜欢可以水培的植物。蝴蝶兰是兰花的一种,花姿优美,花色艳丽夺目,那么蝴蝶兰能否水培呢?

蝴蝶兰可以水培养殖吗

蝴蝶兰是可以水培养殖的,不过需要掌握正确的水培方法。

蝴蝶兰水培方法

一、清理根系

先用干净的水对蝴蝶兰根部的植料进行彻底地清洗,要将死根和烂根仔细清除,条件允许的花友还可用杀菌药物对根进行浸泡,然后把植株置于阴凉处晾干。

二、选择水培容器

在水培容器的选取上,比较建议使用透明的玻璃瓶,其好处是能够随时清晰地看到根的生长情况,其次透光性有助于根的生长,让根发育得更漂亮。

三、固定植株

然后把晾干后的植株小心插入选取的容器内,此时可能有无法很好固定植株的问题,对此解决方法有两个。

1、若植株的大小与容器比较适合,可以不采取额外的固定措施,凭借蝴蝶兰的叶子的支撑即可;

2、有条件的可配合所选容器使用合适的定植篮;

3、还可以取粗度适当的铁丝绕为环状,由根部至茎部进行缠绕,然后钩在容器口上,绕法可依据个人情况进行。

四、生根长叶

以上工作都做到位后,就可以进入漫长等待的过程了,缓苗期的时间是由原本的植株状态决定的,因此会有所不同,一般情况下2-4周便出现新根和新叶。

《蝴蝶兰的组织培养与快速繁殖》由植物养护编辑撰写而成,内容素材主要来源于网络,希望您在植物养护过程中能帮到您!我们把大量的“有关植物组织培养的知识”内容汇集于专题再现给您,希望您喜欢!

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